一、技術定義與核心目標

動物基因型鑒定是通過分子生物學手段檢測個體特定基因位點的遺傳組成（如野生型、突變型、轉基因插入狀態(tài)），以確定其遺傳特征的技術。核心目標包括：

1. 確認基因修飾類型：區(qū)分轉基因、基因敲除/敲入、點突變等模型。

2. 鑒定遺傳狀態(tài)：判定純合子（-/-）、雜合子（+/-）或野生型（+/+）。

3. 評估表達水平：驗證目標基因的轉錄或蛋白表達是否與預期一致。

生物學意義：為遺傳育種、疾病模型構建及功能研究提供分子層面的精準依據(jù)。

二、核心鑒定方法及技術流程

1. PCR + 凝膠電泳（主流方法）

• 原理：針對目標基因設計特異性引物，擴增基因組DNA中的差異片段，通過電泳條帶大小判斷基因型（圖1）。
  關鍵引物設計策略：

  模型類型	引物設計	檢測目標
  基因敲除（KO）	野生型引物：位于敲除序列內(nèi)；突變型引物：位于同源臂外或抗性基因內(nèi)（如Neo）	區(qū)分純合/雜合/野生
  基因敲入（KI）	引物跨過插入位點，擴增片段大小差異需>100bp	確認外源序列整合位置
  轉基因插入	引物結合外源基因（如GFP），需設置內(nèi)參引物（如β-actin）	檢測隨機插入是否存在

• 流程（以小鼠為例）：

• 瓊脂糖凝膠（1.5-2%）電泳，對比Marker判斷條帶大小（圖2）。

• 結果判讀：

• 野生型（+/+）：僅野生條帶（如500bp）。

• 雜合子（+/-）：野生+突變條帶（500bp + 700bp）。

• 純合子（-/-）：僅突變條帶（700bp）。

• 反應體系：模板DNA + 特異性引物 + dNTPs + Taq酶。

• 程序：95℃變性→55-60℃退火→72℃延伸（30-35循環(huán)）。

1. DNA提取：剪尾/采血→蛋白酶K消化→酚氯仿抽提。

2. PCR擴增：

3. 電泳分析：

! PCR電泳結果示意圖（野生型、雜合子、純合子）

2. Southern Blot（金標準驗證）

• 原理：基因組DNA酶切→電泳分離→轉膜→標記探針雜交，檢測基因拷貝數(shù)及整合完整性。

• 適用場景：

• 驗證轉基因拷貝數(shù)及是否重排/缺失（PCR無法檢測）。

• 鑒定隨機插入位點（需結合FISH技術）。

• 局限性：耗時長（>3天）、需大量DNA（>10μg）、技術門檻高。

3. 實時定量PCR（RT-qPCR）

• 功能：

• 快速定量轉基因mRNA表達水平。

• 輔助判斷基因敲除效率（目標基因表達量顯著降低）。

• 優(yōu)勢：靈敏度高、可自動化。

4. 熒光原位雜交（FISH）

• 應用：

• 直接觀察轉基因在染色體上的整合位置。

• 檢測染色體重排或局部缺失（如CRISPR脫靶效應）。

三、基因編輯動物模型的特殊鑒定策略

CRISPR/Cas9模型（如囊性纖維化豬）

1. 細胞階段鑒定：

• 電轉遞送CRISPR組件至原代細胞→G418篩選陽性克隆→PCR+Sanger測序驗證編輯效率。

2. 胚胎/個體鑒定：

• 核移植后電融合形成囊胚→移植至代孕母體→出生后剪尾PCR+測序。

• 關鍵指標：目標基因編輯效率、脫靶效應檢測。

胚胎干細胞系構建（如內(nèi)源標簽融合）

• 流程：

• 電轉Cas9/sgRNA + 同源重組載體至干細胞（如Flip08細胞）。

• 藥物篩選（G418）→單克隆擴增→PCR+測序驗證標簽整合位點。